Изделия подлежащие стерилизации обрабатывают в несколько этапов

Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения
Методы, средства и режимы
ОСТ 42-21-2-85

РАЗРАБОТАН Всесоюзным научно-исследовательским институтом дезинфекции и стерилизации (ВНИИДиС)

Директор института Лярский П.П.
Зам. директора Крученок Т.Б.
Руководитель отдела стерилизации Рамкова Н.В.
Руководитель отдела дезинфекции Соколова Н.Ф.
Исполнители: Абрамова И.М., Гутерман Р.Л., Евтикова Л.В., Иойриш А.Н., Л.С. Трошин К.А., Юзбашев В.Г.

Всесоюзным научно-исследовательским и испытательным институтом медицинской техники (ВНИИИМГ)

Директор института Леонов Б.И.
Исполнители: Терешенков А.И., Рыбчинокая Н.А.

Управлением по внедрению новых лекарственных средств и медицинской техники Министерства здравоохранения СССР
Начальник Управления Бабаян Э.А.

Главным управлением карантинных инфекций Министерства здравоохранения СССР
Начальник Управления Сергиев В.П.

ПОДГОТОВЛЕН К УТВЕРЖДЕНИЮ

Управлением по внедрению новых лекарственных средств и медицинской техники Министерства здравоохранения СССР
Начальник Управления Бабаян Э.А.

Министерством здравоохранения СССР Заместитель Министра Щепин О.П.

ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ

Приказом Министерства здравоохранения СССР № 770 от 10 июня 1985 г.

За Всесоюзным научно-исследовательским институтом дезинфекции и стерилизация (ВНИИДиС) и

Всесоюзным научно-исследовательским и испытательным институтом медицинской техники (ВНИИИМТ)

Зарегистрирован и внесен в реестр государственной регистрации 12.07.85 г. № 8355618

СТЕРИЛИЗАЦИЯ И ДЕЗИНФЕКЦИЯ ИЗДЕЛИЙ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ
Методы, средства и режимы
ОСТ 42-21-2-85 Взамен ОСТ 42-2-2-77

Приказом по Министерству здравоохранения СССР от 10 июня 1985 г. № 770 срок введения установлен с 01.01.1986 г.

Несоблюдение стандарта преследуется по закону

Настоящий стандарт распространяется на изделия медицинского назначения, подвергаемые в процессе эксплуатации стерилизации и (или) дезинфекции.

Стандарт обязателен для учреждений, эксплуатирующих изделия медицинского назначения, а также для организаций и предприятий, разрабатывающих и изготовляющих медицинские изделия.

Стандарт не распространяется на лекарственные препараты и средства их упаковки, на изделия, выпускаемые промышленностью стерильными, на изделия из текстильных материалов (в части дезинфекции), предметы ухода за больными, мебель медицинскую.

Стандарт устанавливает методы, средства и режимы предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции.

Основные понятия из области предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции по ГОСТ 25375-82 (СТ СЭВ 3188-81).

Перечень нормативно-технических документов на химические реактивы и вспомогательные материалы дан в справочном приложении 1 к настоящему стандарту.

Перечень инструктивно-методических документов Минздрава СССР по вопросам стерилизации и дезинфекции дан в справочном приложении 2 к настоящему стандарту.

1. Общие положения

1.1. Установленные в настоящем стандарте методы, средства и режимы предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции являются равнозначными по эффективности для каждого вида обработки.

Примечание. Предпочтение следует отдавать термическим методам стерилизации (паровому и воздушному).

1.2. На основе положений настоящего стандарта должны разрабатываться инструкции, устанавливающие методы, средства и режимы предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции применительно к конкретным изделиям или группам изделий с учетом их назначения и конструктивных особенностей.

1.3. При разработке изделий должен выбираться метод, средство и режим, исходя из устойчивости изделий к средствам предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции в зависимости от материала, степени обработки поверхности, конструктивного исполнения.

Выбранные методы, средства и режимы не должны вызывать изменения внешнего вида, эксплуатационных качеств и других показателей изделия; обработанные изделия не должны оказывать токсического действия.

1.4. Требования устойчивости изделий к средствам предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции должны нормироваться в технических заданиях (медико-технических требованиях) на разработку новых изделий, технических условиях, стандартах, а также указываться в эксплуатационной документации и должны контролироваться на стадии разработки и изготовления изделия.

В технических условиях, в стандартах на серийно выпускаемую продукцию требование устойчивости изделий к предстерилизационной очистке и конкретному методу стерилизации или дезинфекции должно нормироваться с учетом положений настоящего стандарта по результатам предварительно проведенных испытаний.

1.5. В процессе эксплуатации изделий предстерилизационная очистка, стерилизация и (или) дезинфекция должны проводиться в соответствии с настоящим стандартом и инструкциями, утвержденными Министерством здравоохранения СССР, разработанными на основании настоящего стандарта, устанавливающими порядок проведения предстерилизационной очистки, стерилизации, дезинфекции конкретных видов изделий, а также эксплуатационной документации.

1.6. Требования технической документации (в том числе эксплуатационной) в части предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции должны соответствовать настоящему стандарту, инструкциям, утвержденным Министерством здравоохранения СССР, а при отсутствии указанных инструкций по тем или иным видам изделий должны быть согласованы с Управлением по внедрению новых лекарственных средств и медицинской техники Министерства здравоохранения СССР.

1.7. При проведении предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции химическим методом (за исключением газовой стерилизации), дезинфекции методом кипячения допускается применение ингибиторов и других добавок, способствующих снижению коррозии, разрешенных Министерством здравоохранения СССР и не снижающих эффективности предстерилизационной очистки, стерилизации в дезинфекции.

1.8. Контроль стерильности должен осуществляться бактериологическими лабораториями санитарно-эпидемиологических станций и лечебно-профилактических учреждений в соответствии с инструкциями, утвержденными Министерством здравоохранения СССР.

1.9. Контроль работы стерилизаторов осуществляется дезинфекционными станциями и дезинфекционными отделами (отделениями) санитарно-эпидемиологических станций в соответствии с инструкциями, утвержденными Министерством здравоохранения СССР.

1.10. Контроль качества предстерилизационной очистки и дезинфекции должен проводиться лечебно-профилактическими учреждениями, санитарно-эпидемиологическими и дезинфекционными станциями в соответствии с инструкциями, утвержденными Министерством здравоохранения СССР.

2. Предстерилизационная очистка

2.1. Предстерилизационной очистке должны подвергаться все изделия перед их стерилизацией с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов.

2.2. Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очистке в разобранном виде.

2.3. Предстерилизационная очистка должна осуществляться ручным или механизированным (с помощью специального оборудования) способом.

2.4. Механизированная предстерилизационная очистка должна производиться струйным, ротационным методами, ершеванием или с применением ультразвука с использованием поверхностно-активных веществ по п. 2.8 настоящего стандарта и других добавок.

Методика проведения механизированной очистки должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к оборудованию.

Примечание. Ершевание резиновых изделий не допускается.

2.5. Предстерилизационная очистка ручным способом должна осуществляться в последовательности в соответствии с табл. 1.

2.6. При использовании моющего раствора, содержащего 0,5 % перекиси водорода и 0,5 % синтетического моющего средства «Лотос», применяют ингибитор коррозии — 0,14 % олеата натрия.

2.7. По окончании рабочей смены оборудование должно быть очищено механическим способом путем мытья с применением моющих средств.

2.8. Моющий раствор должен включать компоненты в соответствии с табл. 2.

2.9. Инструменты в процессе эксплуатации, предстерилизационной очистки, стерилизации могут подвергаться коррозии. Инструменты с видимыми пятнами коррозии, а также с наличием оксидной пленки подвергаются химической очистке не более 1 — 2 раз в квартал.

3.1. Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения.

3.2. Стерилизация должна осуществляться одним из методов, приведенных в табл. 4 — 8.

4.1. Дезинфекции должны подвергаться все изделия, не имеющие контакта с раневой поверхностью, кровью или инъекционными препаратами.

Изделия, используемые при проведении гнойных операций или оперативных манипуляций у инфекционного больного, подвергают дезинфекции перед предстерилизационной очисткой и стерилизацией.

Кроме того, дезинфекции подлежат изделия медицинского назначения после операций, инъекций и т.п. лицам, перенесшим гепатит В или гепатит с неуточненным диагнозом (вирусный гепатит), а также являющимся носителем НВ-антигена.

Дезинфекция должна осуществляться одним из методов, указанных в табл. 9.

Таблица 1. Предстерилизационная очистка

* Температура раствора в процессе мойки не поддерживается

1. Если инструмент, загрязненный кровью, может быть промыт под проточной водой сразу после использования при операции или манипуляции, его не погружают в раствор ингибитора коррозии (бензоат натрия).

2. В случае необходимости (продолжительность операции) инструмент можно оставить погруженным в раствор ингибитора коррозии (бензоат натрия) до 7 часов.

3. Моющий раствор допускается применять до загрязнения (до появления розовой окраски, что свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающем эффективность очистки). Моющий раствора перекиси водорода с синтетическими моющими средствами можно использовать в течение суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода существенно не изменяется.

4. Режим сушки эндоскопов и изделий из натурального латекса, а также требования к погружению эндоскопов в растворы, должны быть изложены в инструкциях по эксплуатации этих изделий.

Таблица 2. Приготовление моющего средства

х — Для предстерилизационной очистки допускается применение медицинской перекиси водорода, а также перекиси водорода технической марок А и Б. Приводимые в таблице количества перекиси водорода рассчитаны для раствора с концентрацией 27,5 %.

хх — Организации, разрабатывающие и изготовляющие изделия медицинского назначения при проверке устойчивости изделий к средствам предстерилизацаионной очистки, должны использовать растворы перекиси водорода с моющими средствами.

Таблица 3. Химическая очистка хирургических инструментов из нержавеющей стали

х Для скальпелей из нержавеющей стали.
хх Для инструментов с наличием оксидной пленки.
ххх Для инструментов с сильными коррозионными поражениями, места поражений рекомендуется дополнительно очищать ершом или ватно-марлевым тампоном.

Таблица 4. Паровой метод стерилизации (водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

1. Стерилизационные коробки не являются упаковкой для хранения простерилизованных изделий, но если простерилизованный материал хранится в коробках в течение указанного в таблице времени, допускается его использовать по назначению.

2. Изделия из коррозионно-стойкого металла по ОСТ 64-1-72-80 и ОСТ 64-1-337-78.

Таблица 5. Воздушный метод стерилизации (сухой горячий воздух)

Таблица 6. Химический метод стерилизации (растворы химических препаратов)

х Раствор перекиси водорода может использоваться в течение 7 суток со дня приготовления при условии хранения его в закрытой емкости в темном месте. Дальнейшее использование раствора может осуществляться только при условии контроля содержания активно действующих веществ.

хх Температура раствора в процессе стерилизации не поддерживается.

ххх Раствор «Дезоксона-1» может использоваться в течение одних суток.

хххх Организации, разрабатывающие и изготовляющие изделия при проверке устойчивости изделий к средствам стерилизации, могут использовать нестерильную воду.

Таблица 7. Химический метод стерилизации (газовый) стерилизация смесью ОБ и окисью этилена

1. Изделия после предстерилизационной обработки подсушивают при комнатной температуре или при температуре 35 ПС до исчезновения видимой влаги, после чего их упаковывают в разобранном виде.

2. Для поддержания требуемой температуры стерилизации (35, 55 П) микроанаэростаты помещают в термостат или водяную баню.

3. При использовании микроанаэростата или портативного аппарата после окончания стерилизационной выдержки их открывают в вытяжном шкафу и выдерживают в течение 5 часов. Удаление газа из стационарного аппарата производят 10-кратным вакуумированием.

4. Изделия, простерилизованные газовым методом, применяют после их выдержки в вентилируемом помещении (при скорости движения воздуха 20 см/с) в течение:

1 суток — для изделий из стекла, металла;

5 — 13 суток — для изделий из полимерных материалов (резин, пластмасс), имеющих кратковременный контакт (до 30 мин); конкретные сроки проветривания должны быть указаны в ТУ на конкретные изделия;

14 суток — для всех изделий, имеющих длительный контакт (свыше 30 мин) со слизистыми оболочками, тканями, кровью;

21 суток — для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт (свыше 30 мин), используемых для детей.

Таблица 8. Химический метод стерилизации (газовый) стерилизация смесью паров воды и Формальдегида

Примечание. Для нейтрализации формальдегида используют водный раствор аммиака (23 — 25 %).

Таблица 9. Дезинфекция изделий медицинского назначения*

х Подробное изложение дезинфекции отдельных изделий при конкретных инфекционных заболеваниях приведены в соответствующих приказах и методических указаниях, указанных в приложении 2 настоящего ОСТ.

хх Режим дезинфекции химическим методом дан в трех вариантах:

1 — должен применяться при гнойных заболеваниях, кишечных и воздушно-капельных инфекциях бактериальной и вирусной этиологии (грипп, аденовирусные и т.п. болезни), гибитан — только бактериальной этиологии;

2 — при туберкулезе;

3 — при вирусных гепатитах.

1. При разработке изделий медицинского назначения контроль устойчивости к дезинфицирующему агенту следует проводить по режиму, используемому при туберкулезе, а если препарат не рекомендуется при данной инфекции, то по режиму, используемому при вирусных гепатитах.

2. Дезинфекцию медицинского инструментария можно проводить медицинской перекисью водорода и технических марок А и Б с последующей мойкой инструментов.

3. Концентрация дезинфицирующего агента: хлорамин, дихлор — 1, сульфохлорантин, хлороцин, дезам, нейтральный гипохлорит кальция дана по препарату.

4. Для изделий и их частей, не соприкасающихся непосредственно с пациентом, протирание должно проводиться смоченной в дезинфицирующем растворе и отжатой салфеткой во избежание попадания дезинфицирующего раствора во внутрь изделия.

5. После дезинфекции способом погружения изделия должны быть промыты в проточной воде до полного удаления запаха дезинфицирующего средства.

6. Дезинфицирующий раствор должен применяться однократно.

7. При дезинфекции кипячением и паровым методом изделия из полимерных материалов должны быть упакованы в марлю.

Приложение 1
(справочное)

Нормативно-техническая документация на химические реактивы и вспомогательные материалы

Государственный стандарты (ГОСТ), отраслевые стандарты (ОСТ)

1. ГОСТ 177-77 «Водорода перекись. Технические условия»
2. ГОСТ 1341-74 «Пергамент. Технические условия»
3. ГОСТ 1625-75 «Формалин технический. Технические условия»
4. ГОСТ 2156-76 «Натрий двууглекислый. Технические условия»
5. ГОСТ 2228-81 «Бумага мешочная. Технические условия»
6. ГОСТ 2874-82 «Вода питьевая. Гигиенические требования и контроль за качеством»
7. ГОСТ 4201-79 «Натрий двууглекислый кислый. Технические условия»
8. ГОСТ 5850-72 «Фенолфталеин»
9. ГОСТ 6709-72 «Вода дистиллированная»
10. ГОСТ 7247-73 «Бумага для упаковывания продукции на автоматах»
11. ГОСТ 7568-73 «Этилена окись. Технические условия»
12. ГОСТ 10354-82 «Пленка полиэтиленовая. Технические условия»
13. ГОСТ 11680-76 «Ткани хлопчатобумажные бязевой группы. Технические условия».
14. ГОСТ 25263-82 «Кальция гипохлорит нейтральный. Технические условия»
15. ГОСТ 25644-83 «Средства моющие синтетические порошкообразные. Технические условия»
16. ОСТ 6-01-75-79 «Хлорамин Б технический»

Технические условия (ТУ)

1. ТУ 6-01-746-72 «Сульфохлорантин»
2. ТУ 6-02-09-06-78 «Дезоксон — 1»
3. ТУ 6-15-547-82 «Отбеливатели хлорсодержащие»
4. ТУ 6-15-1128-78 «Средство «Хлорцин»
5. ТУ 6-15-1191-79 «Средство для дезинфекции «Дезам»
6. ТУ 6-09-1224-76 «Олеат натрия»
7. ТУ 6-09-2785-78 «Бензоат натрия»
8. ТУ 6-22-1-74 «Метил бромистый»
9. ТУ 18 РСФСР 718-77 «Биолот»
10. ТУ 38-10719-77 «Вещество жидкое моющее «Прогресс»

Приложение 2
(справочное)

Перечень инструктивно-методических документов по вопросам стерилизации и дезинфекции

1. СТ СЭВ 3188-81 «Изделия медицинского назначения. Методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции. Термины и определения».

2. ГОСТ 25375-82 «Методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения. Термины и определения».

3. ОСТ 64-1-337-78 «Устойчивость медицинских металлических инструментов к средствам предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции. Классификация. Выбор метода».

4. Временная инструкция по стерилизации в упакованном виде пластмассовых магазинов одноразового использования для хирургических сшивающих аппаратов (утверждена Минздравом СССР 09.11.72 г. № 995-72).

5. Методические рекомендации по стерилизации аппаратов искусственного кровообращения газообразной окисью этилена (утверждена Минздравом СССР 26.03.73 г. № 1013-73).

6. Временная инструкция по мойке и стерилизации хирургических инструментов и изделий из пластмасс перекисью водорода и смесью окиси этилена с бромистым метилом (утверждена Минздравом СССР 25.08.72 г. № 988-72).

7. Методические указания по контролю паровых стерилизаторов (автоклавов) в лечебных учреждениях (типа «АВ», «АГ», «АШ» и «АОВ») (утверждена Минздравом СССР 28.11.72 г. № 998-72).

8. Методические рекомендации по стерилизации в портативном газовом аппарате (утверждена Минздравом СССР 26.03.72 г. № 1014-73).

9. Методические указания по предстерилизационной обработке и стерилизации резиновых изделий и комплектующих деталей медицинского назначения (утверждены Минздравом СССР 29.06.76 г. № 1433).

10. Методические указания по стерилизации в паровых стерилизаторах перевязочного материала, хирургического белья, хирургических инструментов, резиновых перчаток, стеклянной посуды и шприцев (утверждены Минздравом СССР 12.08.80 г. № 28-4/6).

11. Методические рекомендации по применению дезоксона — 1 для дезинфекции и стерилизации (утверждены Минздравом СССР 24.12.80 г. № 28-15/6).

12. Методические указания по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения (утверждены Минздравом СССР 8.06.82 г. № 28-6/13).

13. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 31 июля 1978 г. № 720 «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».

14. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 6 декабря 1979 г. № 1230 «О профилактике заболеваний в акушерских стационарах».

15. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 8 июля 1981 г. № 752 «Об усилении мероприятий по снижению заболеваемости вирусным гепатитом».

16. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 4 августа 1983 г. № 916 «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц (отделений)».

17. Методические указания по классификации очагов туберкулезной инфекции, проведению и контролю качества дезинфекционных мероприятий при туберкулезе (утверждены Минздравом СССР 4 мая 1979 г. № 10-8/39).

18. Методические указания по применению хлорамина для дезинфекционных целей (утверждены 21 октября 1975 г. № 1359-75).

19. Инструкция по использованию перекиси водорода с моющими средствами для целей дезинфекции (утверждена Минздравом СССР 29.08.70 г. № 858-70).

20. Методические указания по применению сульфохлорантина для целей дезинфекции (утверждены Минздравом СССР 23.06.77 г. № 1755-77).

21. Методические указания по применению хлорцина для дезинфекции (утверждены Минздравом СССР от 24.12.80 г. № 28.13/6).

22. Методические указания по применению дезама для дезинфекции (утверждены Минздравом СССР 24.12.80 г. № 28-14/6).

23. Методические указания по стерилизации некоторых гемосорбентов (утверждены Минздравом СССР 28.12.83 г. № 28-6/5).

24. Методические указания по применению гибитана для дезинфекции (утверждены Минздравом СССР 26.08.81 г. № 28-6/4).

25. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 17.01.79 г. № 60 «О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела».

27. Инструкция по дезинфекции и дезинсекции одежды, постельных принадлежностей, обуви и других объектов в паровоздушно-формалиновых, паровых и комбинированных дезинфекционных камерах и дезинсекции этих объектов в воздушных дезинсекционных камерах (утверждена Минздравом СССР 29.08.77 г.).

Видео:Этапы обработки изделий медицинского назначения. Критические, полукритические, некритические изделияСкачать

Инструктивно-методическое пособие для практикующих медицинских сестер «Организация санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в ЛПУ»

ДЕПАРТАМЕНТ ОХРАНЫ ЗДОРОВЬЯ НАСЕЛЕНИЯ КЕМЕРОВСКОЙ ОБЛАСТИ

ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» РОСЗДРАВА

ГУЗ «Кемеровская областная клиническая больница»

КРОО ПРОФЕССИОНАЛЬНАЯ АССОЦИАЦИЯ МЕДИЦИНСКИХ СЕСТЕР КУЗБАССА

Инструктивно-методическое пособие для практикующих медицинских сестер
«Организация санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в ЛПУ»

к.м.н, заведующая эпидемиологическим отделом ГУЗ
«Кемеровская областная клиническая больница»
Н.Б. Миловидова

д.м.н., профессор кафедры эпидемиологии ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» Е.Б.Брусина

д.м.н., профессор кафедры эпидемиологии ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» О.М.Дроздова

Инструктивно-методическое пособие (пересмотрено и обновлено) подготовлено для организации санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в ЛПУ. Предназначено для практикующих медицинских сестер.

Подлежат ежегодному пересмотру.

Рецензенты: к.м.н. Л.С. Глазовская, к.м.н. Маслов, Т.В. Дружинина

Технологический протокол утвержден на заседании Ученого Совета ГОУ ВПО «Кемеровская государственная медицинская академия» Росздрава (протокол №__1__ от «__27_»_____09______2007г.), Департаментом охраны здоровья населения Кемеровской области «__11__» ____10_____ 2007г.

© Н.Б. Миловидова, Е.Б. Брусина, О.М.Дроздова

© ГУЗ Кемеровская областная клиническая больница

© ГОУ ВПО КемГМА МЗ РФ

Организация санитарно-противоэпидемического и дезинфекционно-стерилизационного режимов в лечебно-профилактических учреждениях является отражением качества оказания медицинской помощи. Соблюдение принципов организации позволяет снизить частоту внутрибольничных инфекций в стационарах различного профиля, длительность пребывания пациентов в стационаре и экономические расходы, связанные с госпитализацией.

В настоящем инструктивно-методическом пособии представлены основные методы дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации, методы контроля их качества. Особое внимание уделяется методике мытья рук, безопасности медицинского персонала при работе с биологическими жидкостями. Рассматриваются вопросы, связанные с организацией санитарно-противоэпидемического режима в стационарах различного профиля, бельевого режима, питания больных, проведения текущей и заключительной дезинфекции, утилизацией отходов.

Для обеспечения инфекционной безопасности как пациентов, так и персонала, в инструктивно-методическом пособии представлены основные изоляционно-ограничительные мероприятия и алгоритм действия медицинского персонала при поступлении инфицированных пациентов. Дана характеристика госпитальных инфекций, гемоконтактных гепатитов, ВИЧ-инфекции – теоретические аспекты и меры профилактики их распространения.

Инструктивно-методическое пособие составлено в соответствии с действующими нормативными документами Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации и предназначено для медицинского персонала лечебно-профилактических учреждений.

Противомикробные мероприятия. Общая характеристика

Противомикробные мероприятия – совокупность способов и методов уничтожения, подавления жизнедеятельности, снижения численности популяции и ограничения распространения возбудителей инфекций в целях лечения, предупреждения развития и распространения инфекционных заболеваний (рис.1).

Рис.1. Противомикробные мероприятия

Стерилизация – совокупность физических и химических способов полного освобождения объектов внешней среды от вегетативных и споровых форм микроорганизмов.

Антисептика – Совокупность способов удаления, уничтожения или подавления жизнедеятельности микроорганизмов в ранах, на коже, слизистых оболочках, полостях в целях лечения и предупреждения развития инфекционного процесса.

Химиотерапия – меры, направленные на прямое уничтожение или подавление возбудителей во внутренней среде организма в целях лечения или профилактики инфекционных и паразитарных болезней.

Дезинфекция – частичное, селективное уничтожение потенциальных возбудителей инфекционных болезней на объектах внешней среды с целью разрыва путей передачи возбудителей инфекционных заболеваний от источников инфекций к восприимчивым людям.

Различают следующие виды и методы дезинфекции (рис.2):

Очаговая дезинфекция — проводится в очагах инфекционных заболеваний и подразделяется на текущую и заключительную.

Текущая дезинфекция – проводится в действующем эпидемическом очаге в присутствии источника инфекции с целью снижения массивности микробной контаминации окружающей больного внешней среды.

Заключительная дезинфекция – предполагает полное уничтожение возбудителей болезни в очаге после удаления из него источника инфекции (госпитализации в инфекционный стационар, выздоровления, выезда, смерти).

Рис.2. Виды и методы дезинфекции

Профилактическая дезинфекция – проводится в отсутствие источника инфекции с целью предотвращения накопления во внешней среде возбудителей инфекционных болезней.

Различают физические, химические и биологические методы дезинфекции.

Физические методы дезинфекции:

Механические – чистка, влажная уборка, стирка, выколачивание, вытряхивание, проветривание, фильтрация.

Термические – воздействие сухого горячего воздуха, водяного пара, горячей воды, обжигание, прокаливание, сжигание, пастеризация, тиндализация, холод, высушивание.

Лучистые – солнечный свет, ультрафиолетовые лучи.

Химические методы дезинфекции – основаны на применении различных химических веществ (дезинфицирующие средства, антисептики и др.), обладающих антимикробным действием.

Биологические методы дезинфекции — основаны на применении различных биологических веществ, обладающих антимикробным действием (биотермические камеры, компостирование, бактериофаги и т.д.).

Категория предметов ухода за больными (Spaulding)

По степени риска инфицирования все предметы, контактирующие с пациентами подразделяются на:

«Критические» предметы – предметы, проникающие через покровы в ткани организма, которые в случае их контаминации любыми микроорганизмами, в том числе спорами бактерий, обусловливают высокую степень риска заражения больных.

«Полукритические» предметы – предметы, контактирующие с неповрежденными слизистыми оболочками и кожей, которые не должны содержать на своей поверхности никаких микроорганизмов, не считая спор бактерий.

«Некритические» предметы – предметы, контактирующие с неповрежденной кожей, но не со слизистыми.

Такое разделение предметов связано с обеспечением необходимого уровня и особенностей технологий обеззараживания (таблица 1,2).

Таблица №1. Категория предметов ухода за больными

Таблица №2.Особенности различных технологий обеззараживания

Камерная дезинфекция является одним из существенных звеньев противомикробных мероприятий. Используется после выписки каждого больного из отделения или является обязательным мероприятием в очаге инфекции для обеззараживания хлопчатобумажных, шерстяных, суконных, кожаных и меховых вещей, матрацев, одеял, подушек, утиля, документов и книг.

В зависимости от действующего агента дезинфекционные камеры делятся на 4 группы:

Паровые, в которых обеззараживание производится насыщенным текучим водяным паром в условиях повышенного давления.

Горячевоздушные – сухим нагретым воздухом.

Пароформалиновые – пароформальдегидная смесь и увлажненный нагретый воздух.

Газовые – химические газовые вещества (сернистый ангидрид, окись этилена, метилбромид, хлорпикрин др.).

Ультрафиолетовое облучение палат, помещений

• УФ облучение осуществляется палатными медицинскими сестрами 2 раза в сутки после проведения влажной уборки помещений. В отделении гематологии – 2 раза в сутки. Палаты с пациентами, находящимися в миелостатической депрессии – 6-8 раз в сутки. Допустимые уровни бактериальной обсемененности воздушной среды помещений ЛПУ представлены в таб.№4.

• Время расчета ультрафиолетового облучения помещений проводит главный инженер или другое ответственное лицо по учету бактерицидных установок. Экспозиция облучение зависит от типа и объема помещения, типа бактерицидной установки и фиксируется ответственным лицом в журнал по установленной форме в соответствии с методическим руководством Р.3.5.1904-04 «Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха в помещениях».

Журнал ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха в помещениях.

Журнал состоит из двух частей. В первую часть заносятся следующие сведения:

Наименование и габариты помещения, номер и место расположения.

Номер и дата акта ввода ультрафиолетовой бактерицидной установки в эксплуатацию.

Тип ультрафиолетовой бактерицидной установки.

Наличие средств индивидуальной защиты (лицевые маски, очки, перчатки).

Условия обеззараживания (в присутствии или отсутствии людей).

Длительность и режим облучения (непрерывный или повторно-кратковременный и интервал между сеансами облучения).

Вид микроорганизма (санитарно-показательный или иной).

Срок замены ламп (прогоревших установленный срок службы).

Во второй части журнала содержится перечень контролируемых параметров (таб. №3):

Таблица №3. ПЕРЕЧЕНЬ КОНТРОЛИРУЕМЫХ ПАРАМЕТРОВ

Таблица 4. Допустимые уровни бактериальной обсемененности воздушной среды помещений ЛПУ в зависимости от их функционального назначения и класса чистоты

Методы контроля качества дезинфекции

Для оценки качества проведения дезинфекции проводятся следующие методы:

2. Химический – химические экспресс-пробы на остаточное количество дезинфицирующих веществ.

3. Бактериологический – исследуют смывы с объектов внешней среды на микробную обсемененность и бактериологический тестовый контроль дезкамер.

Показатели удовлетворительного качества дезинфекционных мероприятий:

Отрицательные результаты посевов проб со всех объектов внутрибольничной среды.

Определение заниженных концентраций дезрастворов не более чем в 5% отобранных проб.

Выявление неудовлетворительных экспресс-проб на остаточное количество дезрастворов не более чем в 2% от числа поставленных проб каждого вида.

Соответствие тестового бактериологического контроля режимам камерной дезинфекции.

Показатели обсемененности воздуха, не превышающие установленные нормативы.

Отсутствие в помещениях ЛПО грызунов, подтвержденное с применением субъективной оценки и объективных методов обнаружения.

Отсутствие в помещениях ЛПО членистоногих, подтвержденное с применением субъективной оценки и объективных методов обнаружения.

Смывы с объектов внешней среды, бактериологический контроль воздуха и стерильность материалов проводит лицензированная бактериологическая лаборатория ЛПУ или Лаборатории Роспотребнадзора (согласно договора). Отбор проб производит специально обученный лаборант в стерильные емкости или пробирки. Медицинскому персоналу подразделений ЛПУ самостоятельно производить отбор проб запрещается!

Предстерилизационной очистке должны подвергаться все изделия перед их стерилизацией с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов.

Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очистке в разобранном виде.

Ершевание резиновых изделий не допускается.

Предстерилизационная очистка ручным способом должна осуществляться в последовательности в соответствии с ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция и изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

При использовании моющего раствора, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства «Лотос», применяют ингибитор коррозии — 0,14% олеата натрия.

По окончании рабочей смены оборудование должно быть очищено механическим способом путем мытья с применением моющих средств.

Инструменты в процессе эксплуатации, предстерилизационной очистки, стерилизации могут подвергаться коррозии. Инструменты с видимыми пятнами коррозии, а также с наличием оксидной пленки подвергаются химической очистке не более 1 — 2 раз в квартал.

Если инструмент, загрязненный кровью, может быть промыт под проточной водой тотчас же после использования при операции или манипуляции, его не погружают в раствор ингибитора коррозии (бензоат натрия).

В случае необходимости (продолжительность операций) инструмент можно оставить погруженным в моющий раствор с ингибитором коррозии до 7 часов.

Моющий раствор допускается применять до загрязнения (до появления розовой окраски, что свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающем эффективности очистки). Моющий комплекс перекиси водорода с синтетическими моющими средствами можно использовать в течение двух суток с момента изготовления, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно подогревать до 6 раз, в процессе подогрева концентрация перекиси водорода не изменяется.

Методы контроля и показатели качества предстерилизационной очистки:

1. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят центры Роспотребназора при плановой и внеплановой проверках ЛПУ.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦСО) ежедневно, в отделениях – ежедневно. Кроме того, контролирует не реже 1 раза в неделю старшая медицинская сестра (акушерка) ЦСО или отделения.

2. Контролю подлежит: в ЦСО — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

3. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств.

4. Методика приготовления реактивов для постановки проб.

4.1. Азопирамовая проба.

4.1.1. Приготовление исходного раствора.

Для приготовления 1 л (куб. дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб. дм) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет 2 месяца при температуре 4 град. С (в холодильнике); при комнатной температуре (20+/-2 град. С) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора в процессе хранения без выпадения осадка не снижает рабочих свойств раствора.

4.1.2. Приготовление реактива азопирам.

Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода. Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться розовое спонтанное окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

4.2. Амидопириновая проба.

Готовят 5% спиртовой раствор амидопирина на 95% этиловом спирте. Данный раствор должен храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике; срок годности раствора — 1 месяц.

Готовят 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода на дистиллированной воде.

Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода. Реактив готовят перед применением.

4.3. Фенолфталеиновая проба.

Готовят 1% спиртовой раствор фенолфталеина на 95% этиловом спирте; раствор хранят во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение месяца.

5. Методика постановки проб.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделий на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку.

6. Учет результатов постановки проб.

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через 1 мин, появляется вначале фиолетовое, затем быстро в течение нескольких секунд переходящее в розово — сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово — сиреневый цвет.

При положительной амидопириновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или не позже чем через 1 мин после контакта реактива с кровью, появление сине — фиолетового окрашивания различной интенсивности. При постановке азопирамовой и амидопириновой проб окрашивание реактивов, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива.

В случае положительной пробы на кровь или на остаточные количества щелочных компонентов моющих средств, всю группу контролируемых изделий, от которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у (таблица 5).

Показатели удовлетворительного качества предстерилизационной очистки:

Отсутствие положительных проб на скрытую кровь.

Отсутствие положительных проб на остаточное количество моющего комплекса.

Таблица 5
Код формы по ОКУД
Код учреждения по ОКПО

ЖУРНАЛ
УЧЕТА КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОБРАБОТКИ

Начат «___» ____________ 199 г. Окончен «___» _____________ 199 г.

Стерилизация. Методы стерилизации

Стерилизация – совокупность физических и химических способов полного освобождения объектов внешней среды от вегетативных и споровых форм микроорганизмов.

Различают следующие методы стерилизации:

Физический (паровой, воздушный, инфракрасный).

Химический (применение растворов химических средств, газовый, плазменный).

Паровой метод стерилизации стерилизующим агентом является водяной насыщенный пар. Метод используется для стерилизации инструментов, перчаток, шовного и перевязочного материалов, белья, питательных сред и лекарственных растворов, резиновых и силиконовых изделий. Стерилизация проводится в автоклаве:

Режим для термостабильных материалов (белье, мягкий материал, инструменты):

t = 132 0 C (2,0 кгс/см 3 ) – 20 минут;

для форвакуумных стерилизаторов нового поколения: t = 134 0 C (2,1 кгс/см 3 )– 5 минут.

Режим для термолабильных материалов (резиновые или силиконовые дренажи, перчатки и др.):

t = 120 0 С (1,1 кгс/см3 ) – 45 минут

для форвакуумных стерилизаторов нового поколения: 126 0 С — (1,4 кгс/см 3 ) – 10 мин.

Воздушный метод стерилизации стерилизующим агентом является сухой горячий воздух. Метод предназначен для стерилизации инструментов, лабораторной и аптечной посуды, а также изделий, которые не могут стерилизоваться паром (тальк, масло). Инструменты в воздушном стерилизаторе размещают в один слой открыто на лотках или упаковывают в бумагу (крафт-пакеты). Хранение стерильных изделий в воздушных стерилизаторах недопустимо. Стерилизация проводится в воздушных стерилизаторах:

t = 200 0 C – 10 минут (для стерилизаторов нового поколения)

t = 180 0 C – 60 минут

t = 180 0 C – 45 минут(для стерилизаторов нового поколения)

t = 160 0 C – 150 минут

В стоматологических медицинских организациях (кабинетах) допускается применять гласперленовые стерилизаторы, в которых стерилизуют боры различного вида и другие мелкие инструменты при полном погружении их в среду нагретых стеклянных шариков. Не рекомендуется использовать данный метод для стерилизации рабочих частей более крупных стоматологических инструментов, которые невозможно полностью погрузить в среду нагретых стеклянных шариков.

Инфракрасный метод: используется инфракрасное излучение.Инфракрасным методом стерилизуют стоматологические и некоторые другие инструменты из металлов.

Химический метод стерилизации стерилизующим агентом является жидкое или газообразное химическое вещество:

• Жидкие: 1. 6% раствор перекиси водорода – 6 часов (при подогреве температуры раствора до 50 0 С – 3 часа);

2. 1% (по надуксусной кислоте) раствор Дезоксона-1 – 45 минут;

3. 2% раствор глутарового альдегида – 6-10 часов.

• Газообразные: окись этилена, пары формальдегида, бромистый метил, газообразный пероксид водорода (плазма перекиси водорода).

При химическом методе стерилизации жидкими стерилянтами необходимо обязательное отмывание простерилизованного объекта от остатков стерилизующего вещества стерильной водой (не менее двух раз). После отмывания стерильные изделия выкладывают на стерильный стол или заворачивают в стерильную простынь и помещают в простерилизованный бикс, в котором простерилизованные изделия могут храниться до 3-х суток. К персоналу, проводящему стерилизацию, предъявляются высокие требования – он должен готовиться к стерилизации также как к работе в операционной: работа проводится в стерильном халате, бахилах, маске, стерильных перчатках.

Плазменный метод: используются стерилизующие средства на основе перекиси водорода в плазменных стерилизаторах. Стерилизуют хирургические, эндоскопические инструменты, эндоскопы, оптические устройства и приспособления, волоконные световодные кабели, зонды и датчики, электропроводные шнуры и кабели и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс, стекла и кремния.

Радиационный метод: стерилизующим агентом являются гамма- и бета-излучение. Данный способ стерилизации проводится только в заводских условиях, требует создания сложных и дорогостоящих систем защиты обслуживающего персонала от радиации.

Механические способы стерилизации предусматривают фильтрование жидкостей через мелкопористые фильтры, пропускание воздуха через бактерицидные фильтры, «промывание» какого-либо помещения (например, бокса) ламинарным потоком стерильного воздуха.

Сроки сохранения стерильности материалов

Сроки сохранения стерильности материалов зависит от метода стерилизации и материала упаковки.

Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках без упаковки, допускается извлекать для использования из стерилизационных коробок не более чем в течение 6 часов после их вскрытия.

Как исключение, одним из методов хранения простеризованных изделий медицинского назначения является использование ультрафиолетовых камер («Панмед» и др.), которые обеспечивают длительный срок хранения – от 3-х до 7 суток).

Внимание! Следует учитывать, что ультрафиолетовые лучи стерилизующим действием не обладают!

Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде, осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала согласно инструкции по его применению.

Внимание! Изделия, стерилизованные без упаковки, должны быть использованы непосредственно после стерилизации!

Методы контроля качества стерилизации:

Методы и средства контроля работы паровых и воздушных стерилизаторов в соответствии с ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция и изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

Проверку температурного режима осуществляют с помощью максимальных термометров, которые помещают в контрольные точки стерилизаторов. Предельные отклонения температуры в различных точках стерилизационной камеры от номинальных значений температур стерилизации должны соответствовать нормативным показателям. Для контроля температуры используют также химические индикаторы (индикаторы типа ИС, «Стериконт», «Стеритест», химические тесты и др.), которые помещают в контрольные точки.

Индикаторы типа ИС, «Стериконт», «Стеритест» и др. представляют собой полоску бумаги с нанесенным на нее индикаторным слоем и предназначены для оперативного визуального контроля совокупности параметров (температура, время и др.) режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов.

Медицинский персонал, использующий средства физического и химического контроля, регистрирует результаты контроля в журнале по форме N 257/у (табл.6).

Бактериологический контроль работы стерилизационной аппаратуры осуществляют с помощью биотестов на основании гибели спор термоустойчивых микроорганизмов. Биотесты представляют собой дозированное количество спор тест — культуры на носителе (или в нем), помещенном в упаковку, которая предназначена для сохранения целостности носителя со спорами и предупреждения вторичного обсеменения после стерилизации. Биотесты помещают в те же контрольные точки стерилизационной камеры, что и средства физического и химического контроля.

Стерилизаторы подлежат бактериологическому контролю после их установки (ремонта), а также в ходе эксплуатации не реже двух раз в год в порядке производственного контроля.

Техническое обслуживание, гарантийный и текущий ремонт стерилизаторов осуществляют специалисты сервисных служб.

Показатели удовлетворительного качества стерилизации:

· Отсутствие роста микроорганизмов при посевах всех биологических тестов в питательные среды;

· Изменение исходного состояния (цвет, агрегатное состояние) химического индикатора;

· Отсутствие высева микрофлоры со стерильных изделий.

Таблица 6
Код формы по ОКУД
Код учреждения по ОКПО

ЖУРНАЛ
РАБОТЫ СТЕРИЛИЗАТОРОВ ВОЗДУШНОГО, ПАРОВОГО (АВТОКЛАВА)

Начат «___» __________ 200_ г. Окончен «___» __________ 200_ г.

Безопасность медицинского персонала

Важный момент в профилактике ВБИ у персонала — личная гигиена. К правилам личной гигие­ны относятся: ежедневный душ, при этом особое внимание обращается на волосы и ногти; своевременная смена халатов и другой личной одежды; защита рта и носа (одноразовы­ми средствами защиты) и поворот головы в сторону от находящихся рядом людей при кашле и чихании; соблюдение технологии мытья рук.

* Хлопчатобумажная сорочка или костюм: рубашка и брюки;

* обувь, подлежащая мытью и дезинфекции.

* пластиковые очки или лицевая маска «Барьер»;

При малейшей возможности контакта с кровью или жидкими выделениями организма, слизи­стыми оболочками или поврежденной кожей любого пациента, а также при наличии порезов или дру­гих повреждений собственной кожи необходимо использование перчаток.

Перчатки следует менять перед каждым пациентом и перед работой с биологическими жидкостями. Использованные перчатки подлежат утилизации. Не допускается использование одной и той же пары перчаток при контакте (для ухода) с двумя и более пациентами, при переходе от одного пациента к другому или от контаминированного микроорганизмами участка тела к чистому. После снятия перчаток проводят обработку рук кожным антисептиком.

Стерильные перчатки надеваются для выполнения асептических процедур.

Последовательность надевания стерильных перчаток:

Взять перчатку за отворот левой рукой так, чтобы пальцы не касались внутренней поверхности перчатки.

Сомкнуть пальцы правой руки и ввести их в перчатку.

Разомкнуть пальцы правой руки и натянуть на» них перчатку, не нарушая ее отворота.

Завести под отворот левой перчатки 2, 3- и 4-й пальцы правой руки, уже одетой в перчатку так, чтобы 1-й палец правой руки был направлен в сторону 1-го пальца на левой перчатке.

Держать левую перчатку 2, 3- и 4-м пальцами правой руки вертикально.

Сомкнуть пальцы левой руки и ввести ее в перчатку.

Расправить отворот левой перчатки, натянув ее на рукав, затем на правой с помощью 2- и 3-го пальцев, подводя их под подвернутый край перчатки.

Последовательность снятия перчаток:

обработать ранку 5% настойкой йода,

заклеить ранку лейкопластырем, надеть перчатки.

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую глаз, носа:

* промыть обильно под проточной водой – не тереть!

При попадании биологических жидкостей пациентов на неповрежденную кожу:

* обработать кожу 70 0 спиртом,

* вымыть руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

* повторно обработать 70 0 спиртом.

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую рта:

* прополоскать обильным количеством воды;

* прополоскать 70 0 спиртом;

В случае повреждения пробирки с кровью во время работы центрифуги:

• крышку открывать медленно, только через 40 минут после полной остановки,
• все центрифужные стаканы и разбитое стекло поместить в дезинфицирующий раствор на 1 час (3% раствором хлорамина, 0,1% раствором Жавелиона, 6% перекисью водорода и т.д.),
• внутреннюю и наружную поверхность центрифуги и крышки обработать дезинфицирующим раствором двукратным протиранием с интервалом 15 минут.

Порядок регистрации аварийных ситуаций

и перечень необходимых мероприятий.

В случае возникновения аварийной ситуации следует:

поставить в известность госпитального эпидемиолога, старшую медицинскую сестру, заведующего отделением;

зарегистрировать данный факт в журнале учета аварийных ситуаций, который хранится у старшей сестры.

Форма ведения журнала:

В графе 4 отмечаются данные лабораторного обследования пациента (если таковые имеются) на HВsAg, анти-ВГС и ВИЧ на момент аварийной ситуации.

В графе 6 отмечаются данные лабораторного обследования медицинского работника на HВsAg, анти-ВГС и ВИЧ на момент аварийной ситуации; через 3,6 и 9 месяцев после травмы.

По каждому случаю проводится расследование в соответствии с положением о порядке рассмотрения и учета несчастного случая на производстве, составляется акт о несчастном случае по форме Н-1 в 2-х экземплярах (в случае утраты трудоспособности на один и более дней).

Медицинским работникам после аварийных ситуаций рекомендуется практиковать безопасные сексуальные отношения, не планировать беременность, отказаться от донорства в течение 12 месяцев.

О всех аварийных ситуациях в необходимо сообщать в территориальный Центр по профилактике и борьбе со СПИДом (ЦПБС) или Консультативно-диагностический кабинет (КДК) службы «Анти-СПИД» один раз в 6 месяцев.

Экстренная химиопрофилактика при аварийных ситуациях:

Решение о начале посттравматической профилактике (ПТП) принимается комиссией в составе: ответственного врача по ВИЧ-инфекции (врач КДК, ЦПБС) и заместителя главного врача с учетом всех особенностей зарегистрированного случая в больнице.

Химиотерапия должна проводиться не позднее первых 72 часов с момента аварийной ситуации.

Показания к началу химиопрофилактики:

1. Контакт с ВИЧ-инфицированным пациентом.

2. Контакт с пациентом с неизвестным ВИЧ-статусом, при положительном его обследовании экспресс-методом на ВИЧ.

3. Контакт с пациентом с неизвестным ВИЧ-статусом при отсутствии уточняющих данных.

7 правил универсальных мер безопасности медицинского персонала от инфекции

Медицинскому персоналу следует помнить и применять 7 правил безопасности для защиты кожи и слизистых оболочек при контакте с кровью или жидкими выделениями организма любого пациента.

1. Мыть руки до и после любого контакта с пациентом.

2. Рассматривать кровь и биологические жидкости всех пациентов как потенциально инфицированные и работать с ними только с использованием СИЗ.

3. Сразу после применения помещать использованные шприцы, системы, сосудистые катетеры в специальный контейнер для утилизации острых предметов, после выполнения манипуляции не снимать иглу со шприца (катетера, системы) до полного их обеззараживания.

4. Пользоваться средствами защиты глаз и масками для предотвращения возможного попадания брызг крови или других жидких выделений в лицо.

5. Использовать специальную влагонепроницаемую одежду для защиты тела от возможного попадания брызг крови или жидких выделений.

6. Рассматривать все белье, запачканное кровью или жидкими выделениями, как потенциально инфицированное.

7. Рассматривать все образцы лабораторных анализов как потенциально инфицированные.

Точное выполнение инструкций по санитарно–гигиеническим и противоэпидемическим требованиям в стационарах ЛПУ, дезинфекционно-стерилизационному режиму, правил личной гигиены и безопасной работы.

Профилактика внутрибольничных заражений больных и персонала.

Контроль и анализ основных режимных моментов:

Случаев внутрибольничных заражений гнойно-септических инфекций, вирусных гепатитов, инфекционных заболеваний (совместно с госпитальным эпидемиологом).

Технологии выполнения инвазивных манипуляций, соблюдения правил асептики.

Дезинфекции предметов ухода.

Дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения.

Наличия дезинфекционных средств, соблюдения правил их хранения.

Наличия мерной посуды, маркировки, соответствия количеству приготавливаемого раствора.

Показателей качества дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения.

Результатов бактериологического лабораторного обследования объектов внешней среды на общую микробную обсемененность (ОМО) и стерильности различных материалов.

Выполнения требований по безопасной работе с кровью и биосредами.

Использования средств индивидуальной защиты (СИЗ).

Наличия, маркировки уборочного инвентаря, правила его использования и хранения.

Выполнения требований к соблюдению бельевого режима.

Выполнения требований к уборке отделения.

Выполнения требований обработки посуды, соблюдения режимных моментов в раздаточной.

Утилизации отходов отделения согласно класса опасности.

Наличия нормативной документации, учетно-отчетных форм.

Обучения персонала отделения мерам профилактики и защиты от внутрибольничных инфекций.

Санитарно-противоэпидемические особенности организации подразделений различного профиля

1. Приемные отделения стационаров.

• Эпидемиологическая задача приемного отделения — не допустить поступления пациента с признаками инфекционного заболевания в палатное отделение стационара общего профиля. С этой целью осматриваются кожные покровы, зев, измеряется температура, проводится осмотр на педикулез и чесотку с отметкой в истории болезни, собирается эпидемиологический и прививочный (по показаниям) анамнез. Приемное отделение оснащается термометрами и шпателями в количестве, соответствующем числу поступающих пациентов. В случае подозрения на инфекционное заболевание пациента изолируют в диагностическую палату при приемном отделении или бокс до установки диагноза или перевода в инфекционное отделение (больницу).

2. Палатные отделения стационаров

Перед поступлением больного в палату кровать, прикроватную тумбочку, подставку для подкладного судна протереть ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором. Кровать застелить постельными принадлежностями, прошедшими камерную обработку.

Больному выделить индивидуальные предметы ухода: плевательницу, поилку, кружку или стакан, подкладное судно (по необходимости) и т.д., которые после использования тщательно мыть.

После выписки больного предметы индивидуального пользования подвергнуть обеззараживанию по режиму, предусмотренному для вирусных гепатитов.

При поступлении в больницу больной должен иметь предметы личной гигиены.

Больных с педикулезом, первично обработанных в приемном отделении, взять под особое наблюдение и подвергнуть повторной обработке в отделении.

Каждый пациент обязан принимать гигиеническую ванну в отделении не реже 1 раза в 7 дней (если нет медицинских противопоказаний) с отметкой в истории болезни. Гигиенический уход за тяжелобольными (умывание, протирание кожи лица, частей тела, полоскание полости рта и т.д.) проводится утром, а также после приема пищи и при загрязнении тела. Периодически должны быть организованы стрижка и бритье больных.

Смену нательного и постельного белья производить по мере загрязнения, но не реже 1 раза в 7 дней.

При смене нательного и постельного белья аккуратно собрать его в специальные полиэтиленовые или клеенчатые мешки «Для грязного белья». Разборку грязного белья производить в отделении категорически запрещается.

Ежедневно перед сном и утром больные должны умываться. Перед каждым приемом пищи больные обязаны мыть руки.

Больным запрещается пользоваться для сидения кроватями соседних больных. Медицинским работникам запрещается сидеть на кроватях больных.

Проветривание палат производить не реже 4 раз в день: после ночного и дневного сна и перед ночным и дневным сном.

Установленные режимом часы сна должны строго соблюдаться всеми больными и не нарушаться персоналом больницы.

Выход больных без необходимости для обследования в другие отделения запрещается.

Выписку больных производить в специально отведенном месте.

Постель (матрац, подушку, одеяло) после выписки больного подвергнуть камерной обработке.

Уборку палат проводить не реже 2 раз в день влажным способом с применением дезинфицирующих средств по режиму, предусмотренному типом стационара.

Все емкости, используемые в отделении, маркировать согласно назначению и использовать в соответствие с маркировкой.

В санитарных комнатах следует предусматривать место для установки судномоечной машины (утилизатора).

3. Палатные отделения хирургического профиля.

Пациентов с гнойно-септическими внутрибольничными заболеваниями изолируют в отделение гнойной хирургии, а при его отсутствии — в отдельную палату.

В отделениях с двумя палатными секциями предусматривается не менее 2 перевязочных. Перевязки пациентам, имеющим гнойное отделяемое, проводят в септической перевязочной, при ее отсутствии, в асептической перевязочной после перевязок пациентов, не имеющих гнойного отделяемого или непосредственно в однокоечной палате. Осмотр пациентов проводят в перчатках и фартуках.

Пациенты с инфекцией любой локализации, независимо от срока ее возникновения, вызванной метициллин (оксациллин) — резистентным золотистым стафилококком или ванкомицинрезистентным энтерококком, подлежат изоляции в боксированные палаты. При работе с данной категорией больных персонал должен соблюдать следующие правила:

при входе в палату персонал надевает маску, спецодежду, перчатки и снимает их при выходе;

предметы ухода, а также стетоскоп, термометр и др. используются только для данного пациента;

перевязка пациента проводится в палате;

при входе и выходе из палаты персонал обрабатывает руки спиртосодержащим кожным антисептиком;

после выписки пациента проводится заключительная дезинфекция, камерное обеззараживание постельных принадлежностей, обеззараживание воздуха;

после дезинфекции проводится лабораторное обследование объектов окружающей среды (в палате). Заполнение палаты проводится после получения удовлетворительных результатов микробиологического исследования.

• организует работу младшего и технического персонала с обязательным контролем выполнения всех объемов работы в отделении;
• смену нательного и постельного белья больных;
• смену спец. одежды медперсонала;
• работу санитарок – буфетчиц;
• проведение гигиенических процедур больным;
• доставку дезредств в отделение;
• доставку использованного белья в прачечную и чистого в отделение;

После выписки больного из отделения сестра – хозяйка обязана:

• принять у выписанного пациента постельные принадлежности,
• обеспечить обработку прикроватной тумбочки и кровати.
• освободившееся койко–место застелить матрацем, прошедшим дезкамерную обработку и чистыми постельными принадлежностями; в случае использования для покрытия матрацев чехлов, из материала, допускающего влажную дезинфекцию камерная обработка не требуется.

Санитарное содержание помещений, оборудования, инвентаря

Коридоры, лестницы моются 2 раза в рабочую смену с применением разрешенных дезинфицирующих средств по режиму, предусмотренному типом стационара.

Перед дневным, после дневного и перед ночным сном выносится мусор и проводится влажная уборка пола. Используется уборочный инвентарь с маркировкой «для палат».

Проветривание проводится перед сном и после сна (4 раза в сутки), после влажной уборки и после ультрафиолетового облучения палат.

Используется уборочный инвентарь с маркировкой «коридор».

Туалеты, ванные комнаты подвергаются генеральной уборке ежедневно ночью, с применением дезинфицирующих средств.

Используется уборочный инвентарь с маркировкой «для туалета».

Уборка производится в специально – выделенном халате и перчатках.

Внимание! Халат, выделенный для уборки туалетов, использовать для других целей запрещается!

Для проведения уборки (кроме помещений класса А) допускается привлекать профессиональные уборочные (клининговые) компании, работающие в круглосуточном режиме, для которых необходимо предусматривать отдельные помещения.

Все помещения, оборудование, медицинский инвентарь должны содержаться в чистоте.

Весь уборочный инвентарь (ведра, ветошь, тряпкодержатели, мопы) хранятся в специально выделенном помещении.

На уборочном инвентаре должна стоять четкая маркировка с указанием помещения и видов работ.

Емкости для мытья полов и помещений хранятся раздельно и используются строго по назначению.

После завершения работы весь уборочный инвентарь обрабатывается дезсредством, выдерживая экспозицию, затем ветошь прополаскивается водой, высушивается и хранится в емкости с соответствующей маркировкой. При невозможности использования одноразовых тканевых салфеток, многоразовые салфетки подлежат стирке.

Внимание! Емкости с рабочими растворами дезинфекционных средств должны быть снабжены плотно прилегающими крышками, иметь четкие надписи или этикетки с указанием средства, его концентрации, назначения, даты приготовления, предельного срока годности раствора!

Влажная уборка помещений (мытье полов, мебели, подоконников, дверей и т.д.) – не менее 2-х раз в сутки с применением моющих растворов и других, разрешенных к применению моющее-дезинфицирующих средств.

Протирка оконных стекол – не реже 1 раза в месяц изнутри и по мере загрязнения, но не реже 1 раза в 4 месяца снаружи.

Генеральная уборка помещений с тщательным мытьем стен, полов, всего оборудования, а также протирания мебели, светильников, защитных жалюзи от пыли проводится по утвержденному графику отделения:

Операционные блоки, перевязочные, смотровые, манипуляционные кабинеты, палаты интенсивной терапии – 1 раз в 7 дней;

Остальные помещения – не реже 1 раза в месяц;

Палатная медицинская сестра контролирует работу, выполняемую младшим медицинским персоналом:

Рациональное использование дезрастворов;

Использование необходимых концентраций дезрастворов для дезинфекции предметов ухода (суден, мочеприемников, плевательниц);

Качество проведения текущей, заключительной и генеральной уборок;

Содержание, хранение и использование уборочного инвентаря.

Непосредственную ответственность за соблюдение бельевого режима в отделении несут старшие медицинские сестры.

Бельевым режимом отделения предусматривается смена белья больным не реже 1 раза в 7 дней; родильницам – 1 раз в 3 дня, нательного белья и полотенец – ежедневно, подкладных салфеток – по мере необходимости. Перед возвращением пациента в палату после операции производится обязательная смена белья. После операции смена белья производится систематически до прекращения выделений из ран;

в операционных, акушерских стационарах (родильных блоках и других помещениях с асептическим режимом, а также в палатах для новорожденных) должно применяться стерильное белье;

В лечебно-диагностических кабинетах белье используется строго индивидуально для каждого пациента.

Смена одежды в подразделениях хирургического и акушерского профиля осуществляется ежедневно и по мере загрязнения. В учреждениях терапевтического профиля — 2 раза в неделю и по мере загрязнения. Сменная обувь персонала, работающего в помещениях с асептическим режимом должна быть из нетканого материала, доступного для дезинфекции. Сменная одежда и обувь должна быть предусмотрена также и для медицинского персонала других подразделений, оказывающего консультативную и другую помощь, а также для инженерно-технических работников.

Стирка спецодежды медицинского персонала в домашних условиях не допускается.

Сбор, хранение и транспортирование грязного белья

За сбор, хранение и транспортирование грязного белья в отделении ответственность несет сестра – хозяйка отделения.

К сбору, сортировке, счету, транспортированию грязного белья не допускается медицинский персонал, занятый уходом за больными или принимающий участие в различных манипуляциях и исследованиях.

Персонал, работающий с грязным бельем, должен быть обеспечен санитарной одеждой (халат, косынка) и средствами индивидуальной защиты (перчатки, косынка, халат, маска или респиратор). После окончания работы с грязным бельем санитарную одежду направляют в стирку, перчатки и маску обеззараживают в дезинфицирующем растворе, руки обрабатывают одним из антисептических средств и моют водой с мылом.

Для сбора грязного белья в палатах используют специальную тару (мешки из клеенки, полипропилена, баки с крышками, бельевые тележки и т.д.)

При сборе грязного белья запрещается встряхивать его и бросать на пол.

После смены белья в палатах проводят влажную уборку с использованием дезинфицирующих растворов. Для этой цели используют дезинфекционные средства, разрешенные к применению в присутствии больных (0,06% раствор Жавелиона, 3%-ный раствор перекиси водорода с 0,5%-ным раствором моющего средства и другие).

Стирка белья должна осуществляться в специальных прачечных или прачечной в составе медицинской организации. Режим стирки белья должен соответствовать действующим гигиеническим нормативам.

Грязное белье из отделений в упакованном виде на промаркированных тележках (для грязного белья) или специальным автотранспортом доставляется в помещение для сбора грязного белья в больничную прачечную (или в центральную грязновую при отсутствии прачечной лечебного учреждения).

Допускается временное хранение (не более 12 ч) грязного белья в отделениях в санитарных комнатах или других специально отведенных для этой цели помещениях с водостойкой отделкой поверхностей, оборудованных умывальником, устройством для обеззараживания воздуха, в закрытой таре (металлических, пластмассовых бачках, плотных ящиках и других емкостях, подвергающихся дезинфекции).

Производить сдачу белья и спецодежды в прачечную следует строго в установленные дни в соответствии с утвержденным графиком.

Внимание! Запрещается разборка грязного белья в отделениях!

Выдача, транспортирование чистого белья

Выдача белья в отделения производится в установленном порядке по утвержденному в медицинском учреждении графику.

Чистое белье выдается на основании накладной, полученной при сдаче белья в стирку.

Для предотвращения возможного загрязнения чистое белье транспортируется в подразделения, упакованное по 10 кг в чистые холщовые мешки.

В отделениях, в помещении для хранения чистого белья, мешки снимают, а белье размещают на стеллажах. Выдается белье сестрой – хозяйкой по мере надобности.

Уборка помещений по типу текущей дезинфекции

Создание безопасной чистой окружающей среды для пациентов и медперсонала.

Разрушение и сведение к минимуму большинства болезнетворных микроорганизмов на поверхности неживых предметов.

Снижение риска перекрестного заражения.

Показания: все помещения лечебно-профилактического учреждения (палаты, кабинеты, вспомогательные помещения), в которых могут находиться пациенты и медперсонал.

Дезинфицирующие /моющие растворы, разрешенные к применению в установленном законом порядке.

Емкости для дезинфицирующих растворов

Уборочный инвентарь либо стационарная или переносная система влажно-вакуумной очистки.

Защитная одежда для медперсонала (комбинезон или халат, влагостойкий фартук, головной убор, маска, перчатки из плотной резины, моющаяся обувь на низком каблуке).

Регулярность уборок: влажная уборка – 2 раза в день, уборка с дезинфицирующими средствами – не реже 1 раза в день.

Убрать весь материал со стерильного стола;

надеть халат «Для уборки кабинета» и резиновые перчатки;

ветошью с дезинфицирующим раствором в концентрации раствора по режиму, предусмотренному для вирусных гепатитов протереть горизонтальные поверхности, столы и др.;

ветошь погрузить в емкость с дезинфицирующим раствором;

в ведре с маркировкой «Для мытья полов» приготовить дезинфицирующий раствор в концентрации по режиму, предусмотренному для вирусных инфекций;

прополоскать и отжать ветошь, вылить раствор в канализацию;

налить в ведро чистой воды, прополоскать ветошь, слить воду в канализацию;

убрать ведро и ветошь в помещение, предназначенное для ее хранения;

вымыть с мылом руки в перчатках, перчатки снять и убрать в тумбочку;

снять и убрать в отведенное для хранения место рабочий халат;

провести гигиеническое мытье рук;

надеть медицинский халат, колпак или косынку;

включить бактерицидный облучатель (время экспозиции зависит от типа облучателя);

при отсутствии светового табло над дверью повесить табличку: « Не входить. Опасно. Идет обеззараживание ультрафиолетовым излучением»;

после окончания экспозиции бактерицидного облучения проветрить помещение;

после окончания экспозиции бактерицидного облучения и проветривания кабинет готов к работе.

Контроль качества: по результатам бактериологического исследования проб воздуха и смывов с вымытых поверхностей.

Уборка по типу заключительной дезинфекции

Сведение до минимума количества микроорганизмов после полной уборки помещений.

Снижение риска перекрестных заражений.

• Помещения операционного блока, хирургических, перевязочных, процедурных и других манипуляционных кабинетов.

Регулярное проведение – по утвержденному графику, график проведения утвержден руководителем ЛПУ.

Дезинфицирующие /моющие растворы, разрешенные к применению в установленном законом порядке.

Уборочный инвентарь либо стационарная или переносная система влажно-вакуумной очистки.

Защитная одежда для медперсонала (комбинезон или халат, влагостойкий фартук, головной убор, маска, перчатки из плотной резины, моющаяся обувь на низком каблуке).

надеть рабочий халат;

освободить поверхности рабочих и перевязочных столов;

освободить шкафы и ящики столов, оставив их открытыми или выдвинутыми; шкафы, столы, оборудование отодвинуть от стен;

надеть защитные очки, перчатки, респиратор;

приготовить в емкости гидропульта дезинфицирующий раствор;

с помощью гидропульта нанести на стены, окна, двери, внутренние поверхности шкафа, тумбочек, столов и другие поверхности дезинфицирующий раствор в концентрации, предусмотренной для режима «вирусные гепатиты» из расчета 0,2л на 1 м2. Если не используется гидропульт, то стены и потолок моют с помощью длинного держателя ветоши;

покинув помещение, плотно закрыть дверь;

выдержать время экспозиции дезинфицирующего раствора;

по окончании экспозиции приготовить в емкостях «Для дезинфекции поверхностей» и «Для мытья пола» приготовить 0,5% моющий раствор;

вымыть стены ветошью на полную высоту и горизонтальные поверхности, пригласить электрика и протереть плафоны;

прополоскать, тщательно отжать ветошь;

вылить остатки моющего раствора в канализацию;

приготовить в емкости «Для дезинфекции поверхностей» дезинфицирующий раствор (по режиму, предусмотренному для инактивации вирусов гемоконтактных гепатитов);

протереть все предметы, извлеченные из шкафа и столов (кроме коробок с лекарственными препаратами);

вылить использованный дезинфицирующий раствор;

в ведре с маркировкой «Для мытья пола» приготовить 0.5% раствор моющего средства;

прополоскать и отжать ветошь, вылить раствор в канализацию;

налить в ведро чистой воды, прополоскать ветошь, слить воду в канализацию;

ветошь оставить в расправленном виде для высушивания;

убрать ведро и ветошь в помещение, предназначенное для ее хранения;

вымыть с мылом руки в перчатках, перчатки снять и убрать в тумбочку;

снять и убрать в отведенное для хранения место рабочий халат;

провести гигиеническое мытье рук;

надеть чистый медицинский халат, колпак или косынку;

включить бактерицидный облучатель (время экспозиции зависит от типа облучателя).

при отсутствии светового табло над дверью повесить табличку: « Не входить. Опасно. Идет обеззараживание ультрафиолетовым излучением».

после окончания экспозиции бактерицидного облучения выключить облучатель

Уборочный инвентарь после дезинфекции обеззаразить, прополоскать ветошь, высушить и хранить в специальном шкафу или выделенном месте.

Анализ регистрируемых внутрибольничных инфекций.

Анализ результатов бактериологического обследования проб воздуха и смывов с обработанных поверхностей.

Гигиенические требования при организации питания больных в отделении

Для транспортирования готовой пищи в отделения используют термосы или плотно закрывающуюся посуду. Хлеб можно транспортировать в полиэтиленовых или клеенчатых мешках, хранение хлеба в которых не допускается. Раздачу пищи производят в течение 2 часов после ее изготовления. Не допускается оставлять в буфетных остатки пищи после ее раздачи больным, а также смешивать пищевые остатки со свежими блюдами.

Раздачу пищи больным производят буфетчицы и дежурные медицинские сестры отделения в халатах с маркировкой «Для раздачи пищи». Не допускается к раздаче пищи младший обслуживающий персонал.

В местах приема передач и в отделениях должны быть вывешены списки разрешенных (с указанием их предельного количества) для передачи продуктов.

Внимание! Ежедневно медицинская сестра отделения должна проверять соблюдение правил и сроков годности (хранения) пищевых продуктов, хранящихся в холодильниках отделения и тумбочках больных!

При обнаружении пищевых продуктов с истекшим сроком годности (хранения), хранящихся без целлофановых пакетов (в холодильнике), без указания фамилии больного, а также имеющих признаки порчи они должны изыматься в пищевые отходы. О правилах хранения больной должен быть информирован при поступлении в отделение.

Для обработки посуды необходимо использовать моющие, чистящие и дезинфицирующие средства, разрешенные к применению в лечебных учреждениях в установленном порядке. В моечных отделениях вывешивают инструкцию о правилах мытья посуды и инвентаря с указанием концентраций и объемов применяемых моющих и дезинфицирующих средств. В помещении буфетной также предусматривается раковина для мытья рук.

Обработка столовой, чайной посуды, столовых приборов должна проводиться раздельно в следующей последовательности:

• при обработке столовой посуды проводится механическое удаление пищи и мытье посуды в первой мойке с обезжиривающими средствами в растворе с температурой воды 50 0 С, во второй мойке – в дезинфицирующем растворе, в третьей – ополаскивание проточной горячей водой с температурой не ниже 65 0 С, просушивание посуды на специальных полках или решетках;
• при обработке чайной посуды и столовых приборов проводится механическое удаление пищи и погружение посуды в раствор с обезжиривающими и дезинфицирующими средствами, во второй мойке – ополаскивание посуды проточной горячей водой с температурой не ниже 65 0 С, просушивание посуды на специальных полках или решетках;
• мочалки для мытья посуды и ветошь для протирки столов по окончании уборки кипятят в течение 15 минут или замачивают в дезинфицирующих растворах;
• кухонную посуду буфетных отделений моют горячей водой с температурой не ниже 50 0 С, ополаскивают проточной горячей водой с температурой не ниже 65 0 С, просушивают посуду на специальных полках или решетках.

После каждой раздачи пищи производят тщательную уборку помещений буфетных в отделениях с применением дезинфицирующих средств. Уборочный материал после мытья полов заливают раствором дезсредств в том же ведре, которое использовалось для уборки, далее ополаскивают в воде и сушат.

Классификация медицинских отходов

Лечебно-профилактическое учреждение вне зависимости от его профи­ля и коечной мощности в результате своей деятельности образует различные по фракционному составу и степени опасности отходы.

Все отходы здравоохранения разделяются по степени их эпидемиоло­гической, токсикологической и радиационной опасности на пять классов опас­ности (табл.8):

Класс А. Неопасные отходы лечебно-профилактических учреждений.

Класс Б. Опасные (рискованные) отходы лечебно-профилактических учреж­дений.

Класс В. Чрезвычайно опасные отходы лечебно-профилактических учреж­дений.

Класс Г. Отходы лечебно-профилактических учреждений, по составу близ­кие к промышленным.

Класс Д. Радиоактивные отходы лечебно-профилактических учреждений.

• Урны, установленные для сбора мусора у входов в здания и на территории (через каждые 50 м) должны очищаться от мусора ежедневно и содержаться в чистоте.

ЛПУ должно быть обеспечено необходимым количеством технологического оборудования для обращения с отходами разных классов опасности (стойки-тележеки, пакеты, мешки, контейнеры, в том числе непрокалываемые, и другое).

Таблица №8. Классификация отходов ЛПУ

Организованная на территории ЛПУ система сбора, временного хранения и транспортирования отходов должна состоять из следующих звеньев:

сбора отходов внутри медицинского подразделения;

транспортирования и перегрузки отходов в (меж)корпусные контейнеры;

временного хранения отходов на территории ЛПУ;

транспортирования внутри-(меж)корпусных контейнеров к месту обезвреживания отходов.

Порядок проведения работ для каждого звена определяется со­ответствующими разделами санитарных правил СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами». В каждом лечебном учреждении разрабатывается и утверждается система сбора, временного хранения и удаления отходов различных классов опасности.

Смешение отходов различных классов на всех стадиях их сбора, хране­ния и транспортирования недопустимо.

21.1. Кишечные инфекции:

При выявлении в отделении больных с подозрением на острую кишечную инфекцию, носителей возбудителей острых кишечных инфекций (ОКИ) обеспечить:

1. изоляцию больного ОКИ в инфекционный стационар или, как исключение, в отдельную палату в случае необходимости продолжения лечения в отделении больницы;

2. карантин в палате и медицинское наблюдение за контактными в течение 7 дней со дня изоляции больного (носителя), измерение температуры тела утром и вечером;

3. забор материала (рвотные массы, промывные воды, испражнения) для бактериологического исследования;

4. однократное бактериологическое обследование контактных по палате;

5. проведение текущей и заключительной дезинфекции в палате с обязательной камерной дезинфекцией постельных принадлежностей;

6. выделение отдельной посуды для питания больных с обязательной дезинфекцией по режиму для кишечных инфекций.

7. передать экстренное извещение на больного по ф.058/у, с обязательной записью в журнале (ф.060/у)

Обработка пациентов, пораженных педикулезом :

При головном или лобковом педикулезе проводят обработку волос головы и волосистых частей тела педикулицидами с последующим их мытьем горячей водой с использованием любого моющего средства.

Для обработки волосистых частей тела используют следующие инсектицидные препараты;

* 0,15% водную эмульсию карбофоса (10-50 мл для обработки одного человека),

* 20% водно-мыльную суспензию бензилбензоата (10-30 мл на одного человека);

* лосьоны; Ниттифор, Лонцид, Нитилон, (50-60мл);

* пеномоющие средства; Талла (10-50 мл),

Экспозиция при указанных средствах составляет 10-40 мин в соответствии с этикеткой на каждом конкретном препарате.

После обработки волос головы и их мытья, волосы следует прополоскать теплым 5-10% водным раствором уксусной кислоты, что способствует удалению гнид. Погибших вшей вычесывают частым гребнем на клеенку или бумагу, которые затем сжигают. Гребень после использования необходимо тщательно промыть горячей водой и протереть спиртом.

Передать экстренное извещение на больного по ф.058/у, с обязательной записью в журнале (ф.060/у)

Для проведения противопедикулезной обработки:

Клеенчатый и хлопчатобумажный мешок для сбора вещей больного.

1. Клеенчатая пелерина.

2. Резиновые перчатки.

3. Ножницы, машинка для стрижки волос или бритвенный прибор.

4. Частый гребень.

6. Косынка (2-3 шт.).

8. Столовый уксус или 5-10% уксусная кислота.

9. Оцинкованное ведро или лоток для сжигания или обеззараживания волос.

10.Препараты для уничтожения вшей (инсектициды).

Дезинфекция в очагах чесотки:

1. Камерная обработка постельных принадлежностей и личных вещей больного и контактных проводится 2 раза — после каждого лечения препаратами или 1-й и 4-й дни при лечении по методу Демьяновича.

2. Дезинфекция в палате проводится 1-2% горячим (50 0 С) мыльно-содовым раствором ежедневно на протяжении всего срока лечения больного и контактных. Уборочный материал после использования уничтожают, руки тщательно моют с мылом.

Методы обработки и лечения пациентов с чесоткой:

Наибольшее распространение при лечении больных чесоткой получили методы терапии бензилбензоатом и по Демьяновичу, обладающие высокой эффективностью, хорошей переносимостью и быстротой оказываемого действия. Независимо от метода лечения втирать лекарственные препараты необходимо в весь кожный покров в определенной последовательности: сначала на кожу обеих кистей, затем в левую и правую верхние конечности, потом в кожу туловища (грудь, спина, ягодицы и половые органы) и, наконец, в кожу нижних конечностей вплоть до пальцев стоп и подошв.

1.Лечение бензилбензоатом. Используется 20% свежеприготовленная суспензия для всех больных и 10% для детей до 3-х лет. Перед употреблением суспензия тщательно взбалтывается, а затем втирается предварительно вымытыми руками в весь кожный покров, кроме головы. 10% суспензию, применяемую для лечения детей, рекомендуется слегка втирать и в кожу волосистой части головы и лица, но так, чтобы препарат не попал в глаза.

В первый день проводят 2 последовательных втирания в течение 10 минут с 10-минутным перерывом для подсыхания кожи. По окончании процедуры больной надевает чистое бельё и одежду. Обязательно меняются постельные принадлежности. Втирание препарата по той же схеме проводится на 4-й день. Обязательным условием лечения является купание перед втиранием бензилбензоата. Руки после обработки нельзя мыть в течение 3-х часов и необходимо дополнительно обрабатывать их после каждого мытья на протяжении курса лечения.

2. Лечение по методу Демьяновича заключается в последовательном втирании в кожу туловища и конечностей 60% раствора гипосульфита натрия (раствор N 1) и 6% раствора соляной кислоты (раствор N 2), а у детей концентрации растворов соответственно составляют 40% (N1) и 4% (N 2).

В начале втирают в кожу раствор N 1 в последовательности, указанной выше. Время втирания препарата 10 минут. После 10-минутного обсыхания процедуру повторяют в той же последовательности.

Еще после 10-минутного перерыва приступают к втираниям в кожу раствора N 2, которые осуществляются в течение 5 минут в той же последовательности 3 раза с интервалами 5 минут.

По окончании втирания больной одевает чистое белье и не моется в течение 3-х дней, но кисти рук обрабатывает повторно после каждого мытья. Через 3 дня больной моется горячей водой и вновь меняет белье, постельные принадлежности.

3. Лечение Перметрином (Медифокс), эмульсия:

1-й день: приготовить свежую водную эмульсию препарата ( 8 мл 5% раствора смешать со 100 мл воды ). Втереть приготовленную эмульсию в кожу рук, туловища и ног, включая подошвы и пальцы. Руки после обработки не мыть в течение 3 часов, в последующем втирать препарат в кожу кистей после каждого их мытья;

2-3-й дни: ежедневно 1 раз в день втирать эмульсию в той же последовательности;

4-й день: смыть остатки препарата теплой водой с мылом без растирания кожи. Сменить нательное и постельное белье.

4. Лечение Спрегалем (аэрозоль):

Больной предварительно моется под душем с мылом. Затем наносится аэрозоль на все тело на расстоянии 20-30 см от поверхности кожи в направлении сверху вниз, за исключением лица и головы.

Нательное и постельное белье необходимо сменить.

Утром следующего дня больной не моется и не меняет белье. Вечером – принимает душ, меняет нательное и постельное белье.

Лечение спрегалем проводится однократно.

5. Особенности лечения чесотки у детей:

Втирание мази в кожу ребенка проводит мать или другое ухаживающее за ним лицо;

Обязательно втирать препарат во все участки кожного покрова, даже в случае ограниченного поражения, исключая кожу в области лица и волосистой части головы.

Во избежание попадания препарата в глаза при прикасании к ним руками маленьким детям надевают распашонку (рубашку) с зашитыми рукавами или х/б варежки (рукавички).

Проведение противоэпидемических мероприятий в очаге туберкулеза:

1. Изолировать больного с клиническими проявлениями или с подозрением на туберкулез органов дыхания в отдельную палату.

2. Приготовить и оставить в палате емкость для текущей дезинфекции с дезинфицирующим средством: 0,2 % раствор Жавелиона, 0,2% раствор Санивапа, 3% раствор Самаровки или 3% раствор Вапусана. Поверхности в палате, санитарно-техническое оборудование, мебель обрабатывается двукратным протиранием с интервалом 15 минут.

3. Приготовить отдельную емкость для обработки посуды больного с одним из перечисленных дезинфицирующих средств, экспозиция 60 минут. Для больного с туберкулезом используется отдельная посуда, ее обработку следует осуществлять в палате.

4. Биологические жидкости пациента, перевязочный материал, инструменты и др. обрабатываются в отдельных емкостях с одним из перечисленных дезинфицирующих средств методом погружения, экспозиция – 60 минут. Перевязки больного следует осуществлять в палате.

5. Работу с пациентом выполнять в отдельно выделенной одежде (халат, шапочка, маска и т.д.).

6. После перевода больного в ОКПТД провести заключительную дезинфекцию в палате с одним из перечисленных дезинфицирующих средств, экспозиция 60 минут. Постельные принадлежности больного подвергаются камерной дезинфекции.

7. Провести бактерицидное облучение воздуха палаты согласно расчетного времени, затем проветривание.

8.передать экстренное извещение на больного по ф.058/у, с обязательной записью в журнале (ф.060/у)

Код формы по ОКУД

Код учреждения по ОКПО

Медицинская документация ф. № 060/у, утвержденная МЗ СССР от 04.10.80г. №10

Журнал
учета инфекционных заболеваний

Начат от: Окончен от:

Общие сведения по госпитальным инфекциям

Госпитальные инфекции — (внутрибольничные (ВБИ), нозокомиальные, госпитальные гнойно-септические инфекции (ГГСИ) — инфекции, развивающиеся вследствие оказания медицинской помощи больному, независимо от степени клинической выраженности, сроков развития (до или после выписки из стационара) или у сотрудников больницы вследствие их работы в данном учреждении, если инфекционный процесс не является закономерным развитием основного заболевания.

В США госпитальные инфекции развиваются у 5,7% пациентов, в Великобритании – 9,2%; в Испании – 8,5%; Германии – 3,6-6,3%.

ПРИЧИНЫ РОСТА ГОСПИТАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ:

Увеличение степени агрессии и инвазии лечебно-диагностического процесса.

Недостаточная антиинфекционная защита внедряемых медицинских технологий.

Нерациональное применение антимикробных препаратов (антибиотиков, антисептиков, дезинфицирующих препаратов и т.д.) и как следствие этого формирование резистентных форм бактерий, селекция госпитальных штаммов.

Рост числа пациентов с иммунодефицитами, злокачественными новообразованиями, сахарным диабетом.

Трудности стерилизации некоторых видов аппаратуры.

Успехи реаниматологии и анестезиологии, позволяющие выхаживать таких пациентов, которые ранее считались иноперабельными и инкурабельными.

Гигиеническая беспечность, нарушение асептики персоналом.

Недостаточные знания персоналом мер профилактики и защиты от внутрибольничных инфекций.

Рост числа родильниц с экстрагенитальной патологией, низкий удельный вес рождаемости здоровых новорожденных и другие причины.

КЛАССИФИКАЦИЯ ГОСПИТАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ:

По характеру патологического процесса:

Традиционные (сальмонеллез, дизентерия, вирусные гепатиты и др.).

Гнойно-септические (инфекции родильниц и новорожденных и инфекции у хирургических больных).

По этиологии: стрептококковые, стафилококковые, сальмонеллезные, синегнойные и другие инфекции.

По локализации инфекционного процесса ГГСИ делятся на :

Гнойные инфекции ран

Инфекции мочевыделительной системы

Инфекции дыхательной системы

Инфекции желудочно-кишечного тракта

По форме проявлений процесса:

Экзогенные — (инфицирование возбудителями связаны с манипуляциями, операциями и другими процедурами, выполняемые персоналом больницы; инфицированные лекарственные препараты, пищевые продукты, изделия медицинского назначения).

Эндогенные — (возбудители распространяются из очага хронической инфекции пациента, при вскрытии полого органа, декомпенсации дисбактериоза, транслокации микроорганизмов из кишечника в кровеносное русло и др.)

Истинный госпитализм — (инфекции, вызванные госпитальными штаммами микроорганизмов).

КАТЕГОРИИ ИСТОЧНИКОВ ИНФЕКЦИИ:

Больные традиционными и гнойно-септическими инфекциями.

Объекты внешней среды.

ПУТИ ПЕРЕДАЧИ ВБИ:

Инструментально-контактный – реализуется через инфицированные инструменты, перевязочный материал, руки персонала и является основным в группе ГГСИ. Его разновидностью является аппаратный путь (эндоскопическая аппаратура, аппараты ИВЛ, искусственного кровообращения и т.д.);

Имплантационный (Эксплантационный) – реализуется через вживляемые в организм различные имплантационные материалы – сосудистые протезы, протезы клапанов сердца, суставов, металлические конструкции, применяемые в травматологии и ортопедии, шовный материал и т.д.

постинфузионный (посттрансфузионный) – реализуется через инфицированные инфузионные растворы, трансфузионные среды (кровь и препараты крови).

Посткатетеризационный – реализуется посредством катетеризации центральных и периферических сосудов.

Аэрогенный – реализуется воздушно-капельным путем – грипп, ветряная оспа, краснуха и т.д. Особое значение имеет у больных со сниженным иммунитетом.

Вирусные гепатиты. Общие сведения

Вирусные гепатиты — большая группа вирусных антропонозных заболеваний, протекающих с пораже­нием печеночной ткани и отличающиеся выраженным полиморфизмом клинических проявлений.

Классификация вирусных гепатитов:

Гемоконтактный механизм передачи: В,С,D,G (GBV-A, GBV-B, GBV-C), SEN, TTV.

Фекально-оральный механизм передачи: А и Е.

Гепатит В и С — глобальная проблема мирового и отечественного здравоохранения. Исходы: развитие цирроза печени или гепатокарциномы при хроническом гепатите В через 25-30, при хроническом гепатите С через 15-18 лет.

Вирусы гепатитов устойчивы во внешней среде, выживают при воздействии высоких и низких температур, химических и физических факторов. В условиях комнатной температуры сохраняется в течение 3-х месяцев, в холодильнике – 6 месяцев, в замороженном виде – 15-20 лет, в высушенном виде – 25 лет. При автоклавировании 120 0 С погибает в течение 45 минут.

Источники инфекции: больные острыми или хроническими формами и вирусоносители.

Инкубационный период: гепатит В – 30-180 дней

гепатит С — от 2-х до 26 недель

Пути передачи вирусных гепатитов В,С:

• Искусственные: гемоконтактный (парентеральные манипуляции, косметические процедуры, гемотрансфузии, внутривенное введение наркотиков);
• Естественные: половой, вертикальный (пери-, интранатально, трансплацентарно, через поврежденную кожу во время родов), горизонтальный (контактно-бытовой).

ПРОФИЛАКТИКА ГЕПАТИТОВ В и С В МЕДИЦИНСКИХ УЧРЕЖДЕНИЯХ

Внимание! Риск профессионального заражения медицинских работников при однократном уколе (порезе) инфицированным инструментарием от пациента с ВГВ – 35%, с ВГС – 3-5%.

Среди профилактических мер основное значение имеют меры, направленные на прерывание естественных и искусственных путей передачи возбудителя и создание специфического иммунитета против гепатита В.

ВОЗ выделяет 3 группы мероприятий по предупреждению гепатитов:

1 группа – общие профилактические мероприятия.

2 группа – универсальные меры профилактики.

3 группа – специфическая профилактика.

Общие профилактические мероприятия – предусматривают проведение образовательной (санитарно-просветительной) работы среди населения, медицинских работников об опасности гепатитов и других инфекциях, передающихся через кровь. Необходимы знания о путях передачи вируса и отдаленных последствиях заболевания.

К универсальным мерам профилактики относят:

Применение форм и методов работы, отвечающим правилам техники безопасности и самым высоким современным стандартам;

Использование средств индивидуальной защиты и защитных приспособлений;

Стремление к минимальному использованию инвазивных процедур;

Максимальное использование инструментария одноразового применения;

Строгое выполнение дезинфекционно-стерилизационного режима;

Тестирование донорской крови;

Эпидемиологический анализ случаев заражения вирусными гепатитами в ЛПУ;

Утилизация отработанных материалов в строгом соответствии с имеющимися приказами и рекомендациями.

К специфическим профилактическим мероприятиям относится вакцинация медицинского персонала высокой группы риска зараженияпротив гепатита В.

ВИЧ-инфекция — заболевание, вызываемое вирусом иммунодефицита человека, поражающее иммунную систему, которое приводит к гибели больного от вторичных поражений (инфекционных и опухолевых процессов).

Терминальная стадия ВИЧ-инфекции – синдром приобретенного иммунодефицита (СПИД).

Вирус малоустойчив, сохраняется в течение 7 дней, в крови – 14 дней. Инактивируется при кипячении в течение 1-5 мин. Быстро погибает при воздействии дезинфектантов – 0,5% гипохлорид натрия, 70 0 спирт, 3% перекись водорода. Относительно устойчив к действию ультрафиолетовых лучей и ионизирующему излучению.

Источники инфекции: больные ВИЧ и ВИЧ-инфицированные.

ВИЧ обнаруживается в любой биологической жидкости (кровь, сперма, ликвор, слюна, слезная жидкость, грудное молоко, вагинальный секрет и т.д.) и в биоптатах различных тканей. Максимальная концентрация ВИЧ содержится в ликворе, также большая концентрация вирусов обнаруживается в крови, сперме, вагинальном секрете.

Инкубационный период: от 3-х недель до 2 лет.

Гомо- и бисексуалисты

Лица с беспорядочными половыми связями

Сексуальные партнеры вышеперечисленных групп

Дети, рожденные от ВИЧ-инфицированных матерей

Половой. Риск инфицирования при однократном половом контакте с ВИЧ-инфицированным партнером – 0,1 -1%.

Вертикальный – через плаценту от ВИЧ-инфицированной женщины заражается до 30% новорожденных, во время родов – до 20%.

Гемоконтактный– через инфицированные кровь и препараты крови – 90%, инфицированный инструментарий (чаще – внутривенное введение наркотиков, использование «общей» иглы).

Внимание! Риск профессионального заражения медицинских работников при однократном уколе (порезе) инфицированным инструментарием – 0,1%.

1. Длительное бессимптомное течение инфекции в среднем до 7 лет.

2. Первые проявления инфекции по типу ОРЗ у 50% заболевших.

3. Развитие клинических проявлений через 7-10 лет по типу инфекций, вызванных условно-патогенной микрофлорой, опухолевых процессов, поражений ЦНС.

4. Отсутствие эффективных методов лечения и специфической профилактики.

5. Смертельный исход неизбежен.

Первые антитела можно обнаружить в крови через 3 недели от момента инфицирования. Собственные антитела у новорожденных появляются в 1-1,5 года жизни.

1. Метод ИФА – выявление суммарных антител к ВИЧ. При положительной реакции проводится повторно.

2. Метод иммуноблоттинга – проводится для подтверждения диагноза ВИЧ-инфекции в случае положительных реакций ИФА – выявляет отдельные виды антител.

3. ПЦР – полимеразно-цепная реакция – определение генетического материала вируса.

Кровь для исследования в лабораторию доставляется в пробирках с резиновыми пробками в отдельном контейнере. Исследование на ВИЧ-инфекцию проводится с обязательным письменным согласием пациента.

Оказание медицинской помощи ВИЧ-инфицированному пациенту:

При подготовке к проведению манипуляции больному с ВИЧ-инфекцией убедиться в наличии аптечки для оказания помощи при аварийной ситуации.

Выполнять манипуляции в двух парах перчатках в присутствии второго специалиста, который может в случае разрыва перчаток или пореза продолжить ее выполнение.

Использовать для оказания помощи ВИЧ-инфицированному отдельный набор инструментария.

1. Приказ МЗ СССР от 31.07.78г. №720 «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией».

2. Приказ МЗ СССР от 12.07.89г. № 408 «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

3. Приказ МЗ СССР от 03.09.91г. №254 «О развитии дезинфекционного дела в стране».

4. Приказ МЗ МП РФ от 16.08.94г. № 170 «О мерах по совершенствованию профилактики и лечения ВИЧ-инфекции в Российской Федерации».

5. Приказ ДОЗН КО № 545 от 10.05.2011г. «О профилактике профессионального заражения ВИЧ-инфекцией и другими гемоконтактными инфекциями»;

7. ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция и изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

8. СанПиН 2.1.7.2790-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к обращению с медицинскими отходами».

9. ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция и изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы».

10. СанПиН 2.1.3.2630–10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность».

11. Руководство Р.3.5.1904-04 «Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха в помещениях».

12. СП 3.1.5.2826-10 от 11.01.2011г. «Профилактика ВИЧ-инфекции».

Список использованной литературы:

1. Е.Б. Брусина. Эпидемиология внутрибольничных инфекций. Учебно-методическое пособие для студентов старших курсов медицинских институтов и врачей. – Кемерово, КГМА МЗ РФ, 1998.-с.28.

2. Дезинфекция: Учебно-методическое пособие для студентов старших курсов медицинских институтов и врачей. / Под ред. д.м.н., Е.Б. Брусиной. – Кемерово, КГМА МЗ РФ, 2001.-с.23.

3. Стерилизация: Учебно-методическое пособие для студентов старших курсов медицинских институтов и врачей. / Под ред. д.м.н., Е.Б. Брусиной. – Кемерово, КГМА МЗ РФ, 2001.-с.27.

4. Руководство по инфекционному контролю в стационаре. Пер. с англ. / Под ред. Р.Венцеля, Т. Бревера, Ж-П. Буцлера – Смоленск: МАКМАХ, 2003г. – 272с.

5. О.М. Дроздова. Вирусный гепатит В. Эпидемиология, профилактика. Учебно-методическое пособие для студентов старших курсов медицинских институтов и врачей. – Кемерово, КГМА МЗ РФ, 1999.-с.29.

6. 5. О.М. Дроздова. Вирусный гепатит С. Эпидемиология, профилактика. Учебно-методическое пособие для студентов старших курсов медицинских институтов и врачей. – Кемерово, КГМА МЗ РФ, 1999.-с.29.

7. М.Г. Шандала. Перспективы и проблемы современной дезинфектологии. / Дезинфекционное доло № 3.- 2003г. – с.19-26.

8. Основы инфекционного контроля. Практическое руководство. 2-ое издание. / Под ред. Патрисии Экерман, Р.Х. Яфаева, Л.П. Зуевой и др., — 2003г.

Уважаемые коллеги!
Все методические рекомендации, пособия и т.д. интеллектуальная собственность авторов, Ассоциации и являются архивными материалами разных лет!!

Видео:"Предстерилизационная очистка мединструментария"Скачать

Дезинфекция медицинских изделий

Дезинфекция изделий медицинского назначения проводится с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов — вирусов (в т. ч. возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекции), бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов на изделиях медицинского назначения, а также в их каналах и полостях.

Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациента. Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения и контроль направлена на профилактику внутрибольничных инфекций у пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений.

Основные этапы обработки инструментов медицинского назначения:

• I этап: дезинфекция;
• II этап: предстерилизационная очистка;
• III этап: стерилизация.

I этап – дезинфекция. Дезинфекцию изделий осуществляют физическим и химическим методами. Выбор метода дезинфекции зависит от особенностей изделия и его назначения. Физический метод дезинфекции: кипячение водяной насыщенный пар под давлением сухой, горячий воздух надежен, экологически чист и безопасен для персонала, поэтому в тех случаях, когда позволяют условия (оборудование, номенклатура изделий и т. д.), при проведении дезинфекции изделий предпочтение следует отдать этому методу. Основные правила дезинфекции физическим методом:

• 1. Перед кипячением изделия очищают от органических загрязнений, промывая водопроводной водой с соблюдением мер противоэпидемической защиты. Отсчет времени дезинфекционной выдержки начинают с момента закипания воды.
• 2. При паровом методе предварительная очистка изделий не требуется. Их складывают в стерилизационные коробки и помещают в паровой стерилизатор.
• 3. Дезинфекцию воздушным методом проводят без упаковки в воздушном стерилизаторе. Этим методом можно дезинфицировать только изделия, не загрязненные органическими веществами.

Химический метод дезинфекции. Основные правила этапа дезинфекции медицинского инструментария с использованием дезинфектантов:

• 1. в качестве средств стерилизации используют только разрешенные физические и химические средства;
• 2. при выборе средств следует учитывать рекомендации изготовителей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств (из числа разрешенных в нашей стране для этой цели) на материалы этих изделий;
  При проведении дезинфекции допускается использование только того оборудования, которое разрешено в установленном порядке к промышленному выпуску и применению;
• 3. Дезинфекцию с использованием химических средств проводят способом погружения изделий в раствор в специальных емкостях из стекла, пластмасс или покрытых эмалью БЕЗ ПОВРЕЖДЕНИЙ. Наиболее удобно применение специальных контейнеров, в которых изделия размещают на специальных перфорированных решетках. Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками, иметь четкие надписи с указанием названия средства, его концентрации и т. д.;
• 4. Промывка изделий под проточной водой до дезинфекции НЕ ДОПУСКАЕТСЯ, т. к. аэрозоль, образующийся в процессе мытья, может инфицировать лиц, занимающихся обработкой, а также поверхности помещений; Однако при применении многих альдегидосодержащих дезинфектантов очистка медицинских изделий от загрязнения является обязательной, так как эти дезинфектанты фиксируют белковые загрязнения, что затрудняет процесс дезинфекции. Такая очистка должна проводиться с соблюдением противоэпидемических принципов, в специальной емкости; промывные воды, салфетки, использованные для очистки, обеззараживаются одним из хлорсодержащих дезинфектантов;
• 5. Медизделия погружаются в дезраствор сразу же после применения таким образом, чтобы дезраствор полностью покрывал инструменты. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не содержалось пузырьков воздуха;
• 6. Значительно загрязненные инструменты подвергают предварительной очистке , а затем собственно дезинфекции;
• 7. Хлорсодержащие средства применяют в-основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала (хлорамин Б, «Клорсепт» и др.);
• 8. По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают. Оставшиеся загрязнения тщательно отмывают с помощью механических средств (ерши, щетки, салфетки марлевые или бязевые и др.) проточной питьевой водой;
• 9. Ершевание резиновых изделий не допускается.

Стандарт дезинфекции шприцев однократного применения: для дезинфекции выделяются емкости с дезинфицирующим средством. Первая емкость — для промывания. Промывание проводится путем двух-трехкратного пропускания дезинфицирующего раствора через канал иглы и внутренней части шприца. Промывание заканчивается на пустом шприце. Не должно быть видимых остатков крови. Иглу не снимать! Смена раствора производится по мере загрязнения. Не более 15 шприцев 0,5 л. Возможен вариант набора дезинфицирующего средства в шприц и слив; пустую емкость, т. е. емкостей будет три.

Для дезинфекции инструментов однократного применения рекомендуется использовать хлорсодержащие средства.
При выполнении манипуляций на дому участковая служба, скорая помощь и медицинский работник должны иметь емкость с дезраствором для ополаскивания на месте. Затем шприцы складывают в плотно закрывающийся контейнер.

Основную дезинфекцию проводить в условиях медицинского учреждения. Вторая емкость — «для дезинфекции».
Емкость должна быть со «съемным ситом». Дезинфицирующее средство набирается в шприц и вынимается поршень. Шприц дезинфицируется с иглой. Выдерживается время экспозиции согласно «Методическим рекомендациям».

Уничтожение острых предметов:

• 1. чтобы избежать случайных уколов иглами, не сгибайте и не ломайте их перед уничтожением;
• 2. обеззараженные иглы должны быть помешены в непрокалываемый контейнер. Расположите контейнер близко к месту, где им будут пользоваться, чтобы не было необходимости переносить острые предметы перед выбрасыванием;
• 3. выбросите герметично закрытый контейнер в мусоросборник;
• 4. деформирование проводится в воздушном стерилизаторе при температуре 180 °С в течение 30 минут.

Как надевать колпачок на уже использованную иглу? Всегда надевайте колпачок на иглу одной рукой, делая это следующим образом:

1. введите кончик иглы в колпачок;
2. наклоните шприц так, чтобы колпачок сел на иглу;
3. другой рукой плотно наденьте колпачок на иглу.

Действуя подобным образом, вы предохраните себя и других от укола иглой. Аккуратно обращайтесь с острым инструментарием – перчатки не предохраняют от повреждения кожи, но они частично очистят иглу от крови, уменьшая количество инокулянта.

Стандартная дезинфекция изделий медицинского назначения многократного применения: предстерилизационная очистка предусматривает окончательное удаление остатков белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационной очистке должны подвергаться все изделия, подлежащие стерилизации. Для этого этапа обработки изделий также используют только разрешенные моющие средства.

Разобранные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде с полным погружением и заполнением каналов. Мойку каждого изделия по окончании экспозиции проводят при помощи ерша, ватно-марлевого тампона и других приспособлений, необходимых при ручной очистке. Каналы изделий промывают с помощью шприца. Ершевание резиновых изделий не допускается. Предстерилизационную очистку ручным способом осуществляют в емкостях из пластмасс, стекла или покрытых эмалью (без повреждений). Машинная мойка изделий предпочтительнее ручной вследствие ограничения контакта персонала с инфицированным материалом и возможности обеспечения более качественной очистки. В настоящее время существует ряд средств, позволяющих объединить в один этап обработки дезинфекцию и предстерилизационную очистку. Этапы дезинфекции такие же, как и для одноразовых шприцев. Рекомендуется использовать альдегидсодержащие средства, окислители, ЧАС.

Этапы предстерилизационной очистки:

• 1 этап: промывание проточной водой после дезинфекции над раковиной в течение 30 секунд до полного уничтожения запаха дезсредств;
• 2 этап замачивание в моющем растворе при температуре воды 50 °С на 15 минут шприцев и головок в разобранном состоянии;
• 3 этап: мытье каждого изделия в этом же растворе, где проводилось замачивание, с помощью ерша или ватного тампона в течение 30 секунд;
• 4 этап: споласкивание проточной водой (после моющего средства «Биолот» – 3 минуты; после растворов перекиси водорода с моющим средством «Прогресс» – 5 минут; после моющих средств «Астра», «Лотос» – 10 минут);
• 5 этап: споласкивание дистиллированной водой в течение 30 секунд;
• 6 этап: просушивание горячим воздухом при температуре +75..+87 °C в сушильных шкафах.

© 2011 — 2021, ООО «Рудез»

«Абактерил» — профессиональные дезинфицирующие и моющие средства. В линейке представлены: концентрат, кожный антисептик, влажные салфетки, дисперсная система, хлорные таблетки и гранулы, дезинфицирующее мыло, детское мыло, гель-антисептик.

🎥 Видео

Проведение предстерилизационной очистки многоразового медицинского инструментария. Ч. 3.Скачать

Дезинфекция и стерилизация инструмента. Пошаговая инструкция. Алитерапия.Скачать

Дезинфекция И Стерилизация Инструментов Медицинского Назначения Процедурной МедсестрыСкачать

"Дезинфекция:виды, методы и способы"Скачать

2.0 Методы стерилизацииСкачать

5 ЭТАПОВ стерилизации маникюрных инструментовСкачать

Стерилизация инструментов. Как проходит стерилизация медицинского инструментария?Скачать

Стерилизация инструментовСкачать

Дезинфекция и стерилизация маникюрного инструмента| Этапы стерилизации #SHORTSСкачать

Как происходит дезинфекция медицинских инструментов в акушерском стационаре №2?Скачать

ЭТАПЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ стоматологических инструментов.Скачать

Стерилизация виды, методы и способы.Скачать

Вебинар: «Организация работы по дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения».Скачать

Стерилизация и дезинфекция в стоматологииСкачать

Стерилизация инструментов в стоматологии. Просто о сложном! (упрощенная версия)Скачать

ЭТАПЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ ИНСТРУМЕНТОВСкачать

Дезинфекция очистка и стерилизация медицинских изделий многократного примененияСкачать

Этапы дезинфекции и стерилизации стоматологических инструментов в Dental Studio PROСкачать